1.離子交換與洗脫
 

　　所謂離子交換，是指溶液中的某一種離子與另一種靠靜電力結(jié)合在惰性載體上的離子進行可逆交換的過程，即溶液中的離子結(jié)合到載體上而載體上的離子被替換下來。若惰性載體上以共價鍵結(jié)合著帶正電荷的活性基團，則可交換陰離子，叫陰離子交換劑；若以共價鍵結(jié)合著帶負電荷的活性基團，則可交換陽離子，叫陽離子交換劑。在一定的條件下，混合物中不同蛋白質(zhì)所帶電荷的性質(zhì)及電荷多少不同，有的能與特定離子交換劑結(jié)合，有的不能結(jié)合；能與離子交換劑結(jié)合的蛋白質(zhì)中，結(jié)合力的大小也不一定相同，所以，采用適當?shù)南疵摋l件，可以對它們進行有效的分離。離子交換過程可以表示如下：
 

　　■一R+Y一+x一→■一R+X一+Y一
 

　　(陰離子交換)■一R—Y++x+→■一R—X++Y+(陽離子交換)
 

　　上式中，■代表惰性載體；R代表惰性載體上的活性基團；Y代表平衡離子(可替換離子)；x代表蛋白質(zhì)分子。
 

　　樣品進入離子交換柱之前，共價結(jié)合于惰性載體上的活性基團大部分處于溶劑化狀態(tài)，并吸附著平衡緩沖液中帶相反電荷的離子。蛋白質(zhì)樣品進入離子交換柱后，由于分子表面一些基團的電荷性質(zhì)與交換劑上活性基團的電荷性質(zhì)相反，因而會通過靜電引力結(jié)合于交換劑上，并把其原來吸附的平衡離子取代下來。蛋白質(zhì)是兩性電解質(zhì)，它與離子交換劑的結(jié)合力取決于分子表面能夠與離子交換劑形成靜電鍵的數(shù)目，而后者首先與分子所攜帶的電荷的數(shù)目有關，其次與蛋白質(zhì)分子的大小及電荷排列也有一定關系，因為它們與蛋白質(zhì)分子是否易于在離子交換劑上的適當部位形成靜電鍵有關。總的來說，蛋白質(zhì)分子與交換劑之間存在三種不同的結(jié)合狀態(tài)：①蛋白質(zhì)分子與交換劑之間的靜電鍵數(shù)目很多，以致它們同時解離的機率等于零。洗脫時，這部分蛋白質(zhì)由于結(jié)合緊密而停留在柱頂端。②蛋白質(zhì)分子與交換劑之間的靜電鍵數(shù)目相對較少，它們同時解離的機率達到某一有限值(0～1之間)。洗脫時，某一種蛋白質(zhì)分子的靜電鍵在某一時間里同時解離，隨洗脫液向下移動。③蛋白質(zhì)分子與交換劑之間的靜電鍵數(shù)目極少，*不與交換劑結(jié)合。處于這種狀態(tài)的蛋白質(zhì)分子隨洗脫液的前峰移動，呈現(xiàn)一個高而窄的“穿過峰’’(“不交換峰”)。如果混合物中有幾種蛋白質(zhì)同時處于這種狀態(tài)，那么它們會同時被洗脫下來，達不到分離目的。采用陽離子交換劑時，帶負電荷的蛋白質(zhì)分子不能結(jié)合而呈“穿過峰”洗脫下來。
 

　　蛋白質(zhì)分子在離子交換劑上的結(jié)合狀態(tài)是隨著環(huán)境條件的變化而改變的。洗脫就是通過改變緩沖液離子強度或/和pH來改變蛋白質(zhì)與交換劑的結(jié)合狀態(tài)，降低其與交換劑的結(jié)合力，使交換上去的不同蛋白質(zhì)分子以不同速度洗脫下來，達到分離純化的目的。增加緩沖液的離子強度時，由于洗脫液中高離子強度競爭性離子的存在，與交換劑結(jié)合的蛋白質(zhì)分子被取代下來進入洗脫液中。洗脫液中離子種類不同時，取代能力不一樣。改變緩沖液的pH時，蛋白質(zhì)分子的解離度降低，電荷減少，從而減弱其與交換劑的結(jié)合力。應用陰離子交換劑時要降低pH；應用陽離子交換劑時要升高pH。有時，同時改變兩個方面的條件，有利于分離復雜的蛋白質(zhì)混合物。在恒定的洗脫條件下，往往難以將復雜的蛋白質(zhì)混合樣品有效地分離。通常采用不斷改變洗脫條件的方法，即用梯度洗脫的方法來分離蛋白質(zhì)混合樣品。
 

　　雖然離子交換層析法分離蛋白質(zhì)時，主要通過離子交換的作用，但實際上也可能存在一些疏水吸附和分子篩作用。
 

　　2.離子交換劑
 

　　人工合成的離子交換劑由高分子的不溶性基質(zhì)和許多與其共價結(jié)合的帶電荷的活性基團組成。由于活性基團的電離性質(zhì)不同，而有強酸性、強堿性、弱酸性和弱堿性之分。不溶性基質(zhì)主要有樹脂、纖維素、葡聚糖凝膠、聚丙烯酰胺凝膠和硅膠等。
 

　　離子交換樹脂一般只適合分離小分子物質(zhì)如氨基酸等，不適合分離蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)，一方面是因為大分子不易進入樹脂緊密交聯(lián)結(jié)構(gòu)的內(nèi)部，另一方面是因為交聯(lián)聚苯乙烯骨架疏水性很強，用于蛋白質(zhì)分離時，會出現(xiàn)疏水性的不可逆吸附。此外，離子交換樹脂的機械強度較差，而且樹脂的體積常隨著溶劑離子強度的變化發(fā)生溶脹和收縮。離子交換纖維素的種類很多，可分為陰離子交換纖維素和陽離子交換纖維素兩大類。由于這些材料是纖維狀的，大部分活性基團分布在表面，所以，適合于分離蛋白質(zhì)等生物大分子。二乙基氨乙基纖維素(DEAE一纖維素)和羧甲基纖維素(CM一纖維素)分別是應用得*泛的陰離子交換纖維素和陽離子交換纖維素。另外，根據(jù)纖維素顆粒的物理結(jié)構(gòu)不同，可分為“纖維型，，和“微晶型”兩大類。‘‘微晶型”因顆粒細、比重大，能制成緊密的柱，交換容量大，分辨率高。
 

　　離子交換葡聚糖凝膠和聚丙烯酰胺凝膠具有許多優(yōu)點：不會引起被分離物質(zhì)的變性或失活；非特異性吸附很低；交換容量大(為離子交換纖維素的3～4倍)；容易制成微球型，因此裝柱和層析時的流速都較易控制。它的缺點是隨著洗脫液的離子強度和pH的變化，床體積變化大，明顯影響流速；另外，由于它的凝膠性質(zhì)，有時會把大分子物質(zhì)排阻在網(wǎng)絡結(jié)構(gòu)之外。
 

　　目前，用于蛋白質(zhì)和多肽離子交換HPLC的多為以硅膠為載體的離子交換劑。以硅膠為載體的離子交換劑的主要優(yōu)點是有很好的機械強度，能耐受較高的層析柱壓，可適應廣泛種類的流動相，在含有變性劑、有機溶劑和高離子強度的洗脫液中均能使用，不會發(fā)生明顯的溶脹與收縮，而且可以制成各種孔徑5～1000nm的剛性填料。根據(jù)硅膠載體上鍵合的活性基團的不同，可分為強酸性、強堿性、弱酸性和弱堿性的離子交換劑。通常用于蛋白質(zhì)與多肽分離的強酸性陽離子交換劑聯(lián)有磺酸基(一S03H)；強堿性陰離子交換劑聯(lián)有季胺堿基[一CH2N+(CH3)3]；弱酸性陽離子交換劑聯(lián)有羧甲基(一CH2一COO一，CM)；弱堿性陰離子交換劑聯(lián)有二乙基氨乙基[一CH2CH2N(CH2CH2)2，DEAE]。強酸性和強堿性離子交換劑的優(yōu)點是流動相較大范圍內(nèi)的pH不會改變載體活性基團的帶電性質(zhì)，因而在酸性、中性和堿性的流動相中均能使用。弱酸性(CM型)的離子交換劑宜在pH>4.0的環(huán)境中使用，弱堿性(DEAE型)的離子交換劑宜在pH<9.6的環(huán)境中使用。弱酸性和弱堿性離子交換劑由于對
 

　　H+和OH一
 

　　有較大的親和力，為洗脫和再生帶來了方便，對于一些吸附性能較強的蛋白質(zhì)與多肽樣品采用弱堿性和弱酸性的交換劑，可以在較溫和的條件下，即較低的鹽濃度和較小的pH改變的情況下把樣品洗脫下來。這對于某些蛋白質(zhì)的活性保持通常是很有意義的。以硅膠為載體的離子交換劑可有不同顆粒孔徑供選擇，大孔徑的填料為相對分子質(zhì)量Mr大的蛋白質(zhì)提供更多可交換的基團，使每克交換劑的交換容量增大。一般蛋白質(zhì)樣品應選擇孔徑為30nm的交換劑，對于相對分子質(zhì)量Mr150000以上的蛋白質(zhì)，應當選擇孔徑l00nm的交換劑。
 

　　3.離子交換柱層析條件的選擇
 

　　對于分離一個特定的蛋白質(zhì)，選擇什么樣的柱子、離子交換劑和流動相等需根據(jù)具體情況統(tǒng)籌考慮，主要是根據(jù)待分離蛋白質(zhì)本身的理化性質(zhì)和生物學性質(zhì)確定。因此，在采用離子交換層析法進行蛋白質(zhì)的分離之前，應當對待分離的蛋白質(zhì)的性質(zhì)有所了解，如等電點、相對分子質(zhì)量、疏水性、生物活性及測定方法、溶解性、濃度、發(fā)生聚合的可能性、穩(wěn)定性以及微觀不均一性等。由于多數(shù)情況下離子交換柱層析采用梯度洗脫，因而柱子都不需很長。了解樣品的等電點決定選用陽離子還是陰離子交換劑以及流動相的pH；樣品的相對分子質(zhì)量Mr將決定選用多大孔徑的柱填料；疏水性強的樣品則要求選用疏水吸附較小或親水性載體的交換劑，以防止非特異性疏水吸附；活性測定方法可用來鑒定分離到的樣品及測定回收率；樣品的溶解性在選用流動相的種類時是必須考慮的，并依此決定是否要在流動相中添加促溶劑；根據(jù)樣品的穩(wěn)定性決定層析溫度、流動相pH以及是否要在流動相中添加穩(wěn)定劑；樣品的濃度和含量是選擇柱體積大小和每次進樣量的依據(jù)；對于那些存在微觀不均一的樣品，由于它們在結(jié)構(gòu)和性質(zhì)上極其相似，所以在分離時要采用分辨率盡可能高的條件(如等梯度洗脫)；對某些樣品還要選用適當?shù)臉悠窛舛取H和鹽濃度以防止其發(fā)生聚合。
 

　　(1)離子交換劑的選擇在等電點已知的前提下，若所用緩沖液的pH高于等電點，則用陰離子交換劑；反之，若所用緩沖液的pH低于等電點，則用陽離子交換劑；若先確定了所用離子交換劑的類型，那么，就必須對緩沖液的pH作相應的調(diào)整。但在實際應用中，為了避免樣品處于過酸或過堿的環(huán)境，對于酸性蛋白質(zhì)和多肽樣品(pI<6)，通常是使其帶有負電荷而采用陰離子交換劑；對于堿性蛋白質(zhì)和多肽樣品(pI>8)，通常是使其帶有正電荷而采用陽離子交換劑。等電點未知時，可參照電泳分析的結(jié)果。在中性和偏堿性條件下電泳時向陽極移動較快的物質(zhì)，同樣條件下可被陰離子交換劑吸附；向陰極移動或向陽極移動較慢的物質(zhì)，同樣條件下可被陽離子交換劑吸附。但有時有例外，因為某一物質(zhì)的層析行為，除與分子的凈電荷有關外，還與它的分子大小、分子結(jié)構(gòu)和電荷排列等有關。對于等電點未知的蛋白質(zhì)，還可用陰離子交換劑和陽離子交換劑分別在較高pH(如pH8.6)和較低pH(如pH5.5)條件下進行離子交換實驗，觀察交換吸附的情況。如果待分離的物質(zhì)能被兩種交換劑吸附，則兩種離子交換劑都可用于分離，而且待分離物質(zhì)與其他成分分離的機會更多。如果都不吸附，則盡量降低樣品和起始緩沖液的鹽濃度，直至幾乎為零。若發(fā)現(xiàn)被吸附的物質(zhì)由于吸附太牢而不易洗脫，則應選用交換當量較小或具有弱解離活性基團的離子交換劑。
 

　　(2)緩沖液的選擇緩沖液離子應不影響被分離物質(zhì)的活性并不干擾其測定，不影響樣品的溶解度和穩(wěn)定性。如洗脫液要用280nm波長檢測時，緩沖液內(nèi)就不能有芳香族化合物；如要用215～225nm波長檢測肽鍵的含量，則不能用含羧基的緩沖液。采用陽離子交換劑時，應選用陰離子型緩沖液，如磷酸、醋酸緩沖液等。采用陰離子交換劑時，應選用陽離子型緩沖液，如Tris、吡啶緩沖液等。
 

　　緩沖液pH的確定首先取決于被分離物質(zhì)的等電點，采用陽離子交換劑時應低于物質(zhì)的等電點，采用陰離子交換劑時應高于物質(zhì)的等電點。同時要結(jié)合考慮被分離物質(zhì)的溶解度、穩(wěn)定性和離子交換劑的活性基團的PK´。用陰離子交換劑時pH應低于其pK´，用陽離子交換劑時pH應高于其pK´，且應使緩沖液pH介于樣品等電點和pK´之間。
 

　　為了降低鹽離子的競爭，起始緩沖液的濃度要盡可能的低(如0.01mol/L左右)。這就需要選用其pK´接近所需pH的緩沖離子，以使緩沖液具有較強的緩沖能力，避免緩沖離子與離子交換劑作用而引起pH的改變。當確信樣品易被吸附后，可適當提高起始緩沖液的濃度以保證一定的緩沖能力。